Influencia de la temperatura y del tiempo de almacenaje sobre las reservas lipídicas de nemátodos entomopatógenos
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La principal fuente de energía de los nematodos entomopatógenos (NEP) en su fase infectiva son los lípidos, el nivel de esas reservas puede estar influenciado por el almacenamiento e interferir en su infectividad. El objetivo de este trabajo fue evaluar el porcentaje de lípidos en juveniles infectantes (JI) almacenados en diferentes temperaturas y asociar esto con su infectividad. Suspensiones de Steinernema carpocapsae, S. riobravis, Heterorhabditis sp. JPM4, Heterorhabditis sp. CCA y Heterorhabditis sp. PI fueron incubadas por cero, 15, 30, 60, 90, 120, 150 y 180 días a 8, 16, 20, 24 y 28°C. La cantidad de lípidos se evaluó a través del método colorimétrico. Para cada tratamiento se evaluó la infectividad de los JI en Galleria mellonella. Todos nematodos presentaron reducción de lípidos a lo largo del tiempo, sin embargo, hubo variación de acuerdo con la temperatura. Los nematodos mantuvieron sus lípidos por mayor tiempo en 8, 16 y 20°C, ya en 24 y 28°C el porcentaje disminuyó rápidamente. Los JI de Heterorhabditis se mostraron menos tolerantes a las temperaturas de 8, 24 y 28°C comparados con los del género Steinernema en relación a la infectividad. Las temperaturas de 16 y 20°C fueron las que menos afectaron la infectividad al final de los 180 días. De esta manera, los lípidos y la infectividad están influenciados por el almacenamiento a diferentes temperaturas, en las especies experimentadas. Estos datos son de gran utilidad para tener éxito en el uso de nemátodos entomopatógenos como agentes de control biológico.
BARRETT, J.; WRIGHT, D. J. 1998. Intermediary metabolism. p. 331353. En: Perry, R. N.; Wright, D. J. (eds.). The physiology and biochemistry of free-living and plant-parasitic nematodes. CAB International. Wallingford. 448 p.
BORNSTEIN-FORST, S.; KIGER, H.; RECTOR, A. 2005. Impacts of fluctuating temperature on the development and infectivity of entomopathogenic nematode Steinernema carpocapsae A10. Journal of Invertebrate Pathology 88 (2): 147-153.
CHITWOOD, D. J. 1998. Biosynthesis. p. 303-330. En: Perry, R. N.; Wright, D. J. (eds.). The physiology and biochemistry of free-living and plant-parasitic nematodes. CAB International. Wallingford. 448 p.
CROLL, N. A. 1972. Energy utilization of infective Ancylostoma tubaeforme larvae. Parasitology 64 (3): 355-368.
DUTKY, S. R.; THOMPSON, J. V.; CANTWE, G. E. 1964. A technique for the mass propagation of the DD-136 nematode. Journal of Insect Pathology 6 (4): 417-422.
FINNEGAN, M.; DOWNES, M. J.; O’REGAN, M.; GRIFFIN, C. T. 1999. Effect of salt and temperature stresses on survival and infectivity of Heterorhabditis spp. infective juveniles. Nematology 1 (1): 69-78.
FITTERS, P. F. L.; GRIFFIN, C. T. 2004. Spontaneous and induced activity of Heterorhabditis megidis infective juveniles during storage. Nematology 6 (6): 911-917.
FITTERS, P.; PATEL, M. N.; GRIFFIN, C. T.; WRIGHT, D. J. 1999. Fatty acid composition of Heterorhabditis sp. during storage. Comparative Biochemistry and Physiology 124 (1): 81-88.
FODOR, A.; DEY, I.; FARKAS, T.; CHITWOOD, D. J. 1994. Effects of temperature and dietary lipids on phospholipid fatty acids and membrane fluidity in Steinernema carpocapsae. Journal of Nematology 26 (3): 278-285.
GEORGIS, R.; KOPPENHÖFER, A. M.; LACEY, L. A.; BÉLAIR, G.; DUNCAN, L. W.; GREWAL, P. S.; SAMISH, M.; TAN, L.; TORR, P.; VAN TOL, R. W. H. M. 2006. Successes and failures in the use of parasitic nematodes for pest control. Biological Control 38 (1): 103-123.
GLAZER, I.; SALAME, L. 2000. Osmotic survival of the entomopathogenic nematode Steinernema carpocapsae. Biological Control 18 (3): 251-257.
GREWAL, P. S. 2000. Anhydrobiotic potential and long-term storage of entomopathogenic nematodes (Rhabditida: Steinernematidae). International Journal for Parasitology 30 (14): 995-1000.
HASS, B.; DOWNES, M. J.; GRIFFIN, C. T. 2002. Persistence of four Heterorhabditis spp. isolates in soil: role of lipid reserves. Journal of Nematology 34 (2): 151-158.
HATAB, M. A.; GAUGLER, R. 1999. Lipids of in vitro cultured Heterorhabditis bacteriophora. Biological Control 15 (3): 113-118.
JAGDALE, G. B.; GREWAL, P. S. 2003. Acclimation of entomopathogenic nematodes to novel temperatures: trehalose accumulation and the acquisition of thermotolerance. International Journal for Parasitology 33 (2): 145-152.
LEE, D. L. 1960. The distribution of glycogen and fat in Thelastoma bulhõesi (Magalhães, 1900), a nematode parasitic in cockroaches. Parasitology 50: 247-259.
LEE, D. L.; ATKINSON, H. J. 1977. Physiology of nematodes. Columbia University, New York. 215 p.
LEWIS, E. E.; SELVAN, S.; CAMPBELL, J. F.; GAUGLER, R. 1995. Changes in foraging behaviour during the infective stages of entomopathogenic nematodes. Parasitology 110: 583-590.
MENTI, H.; PATEL, M. N.; WRIGHT, D. J.; PERRY, R. N. 2003. Lipid utilisation during storage of the entomopathogenic nematodes Steinernema feltiae and Heterorhabditis megidis from Greece and the UK. Nematology 5 (1): 31-37.
MOLINA, J. P.; LÓPEZ, N. J. C. 2001. Producción in vivo de tres entomonematodos con dos sistemas de infección en dos hospedantes. Revista Colombiana de Entomología 27 (1-2): 73-78.
PARRA, J. R. P. 1998. Criação de insetos para estudos com patógenos. p. 1015-1037. En: Alves, S. B. (ed.). Controle microbiano de insetos. FEALQ. Piracicaba. 1163 p.
PATEL, M. N.; WRIGHT, D. J. 1997. Phospholipid fatty acid composition in steinernematid entomopathogenic nematodes. Comparative Biochemistry and Physiology 118 (3): 649-657.
PATEL, M. N.; STOLINSKI, M.; WRIGHT, D. J. 1997. Neutral lipids and the assessment of infectivity in entomopathogenic nematodes: observations on four Steinernema species. Parasitology 114: 489-496.
QIU, L.; BEDDING, R. 2000. Energy metabolism and its relation to survival and infectivity of infective juveniles of Steinernema carpocapsae under aerobic conditions. Nematology 2: 551-559.
SERWE-RODRIGUEZ, J.; SONNENBERG, K.; APPLEMAN, B.; BORNSTEIN-FORST, S. 2004. Effects of in host desiccation on development, survival, and infectivity of entomopathogenic nematode Steinernema carpocapsae. Journal of Invertebrate Pathology 85 (3): 175-181.
STAMPS, T. W.; LINIT, M. J. 1995. A rapid and simple method for staining lipid in fixed nematodes. Journal of Nematology 27 (2): 244-247. STOREY, R. M. J. 1983. The initial neutral lipid reserves of juveniles of Globodera spp. Nematologica 29 (2): 144-150.
VAN GUNDY, S. D. 1985. Ecology of Meloidogyne spp.emphases on environmental factors affecting survival and pathogenicity. p. 177182. En: Sasser, J. N.; Carter, C. C. (eds.). An advanced treatise on Meloidogyne. North Carolina State University Graphics. Raleigh. 111 p.
WHITE, G. F. 1927. A method for obtaining infective nematode larvae from cultures. Science 66 (1709): 302-303.
WRIGHT, D. J.; PERRY, R. N. 2002. Physiology and biochemistry. p. 145-168. En: Gaugler R. (ed.). Entomopathogenic nematology. CAB International. Wallingford. 388 p.
WRIGHT, D. J.; GREWAL, P. S.; STOLINSKI, M. 1997. Relative importance of neutral lipids and glycogen as energy stores in dauer larvae of two entomopathogenic nematodes, Steinernema carpocapsae and Steinernema feltiae. Comparative Biochemistry and Physiology 118 (2): 269-273.
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